新型鴨病毒性肝炎病毒

1、新型鴨病毒性肝炎病毒巢式RTPCR檢測方法的建立及應用報告人：王梓1.鴨病毒性肝炎鴨病毒性肝炎(DuckViralHepatitisDVH)是由鴨病毒性肝炎病毒(DuckHepatitisVirusDHV)引起雛鴨的一種以肝臟為主要病理變化的急性、高度致死性、接觸性傳染性疾病。鴨病毒性肝炎在臨床上以發病急、傳播迅速、病程短、高死亡率為主要特征，該病主要侵害4周齡以內的雛鴨10口齡以內的雛鴨的死亡率高達90%~95%。1.1DHV的歷史與

2、分布鴨肝炎病毒(DHV)包括三個血清型，分別引起Ⅰ型Ⅱ型和Ⅲ型鴨病毒性肝炎。其中Ⅰ型鴨病毒性肝炎呈世界性分布。我國流行的鴨病毒性肝炎主要為Ⅰ型鴨病毒性肝炎，近年來陸續有新型鴨病毒性肝炎發現三個型之間無抗原相關性，沒有交叉保護和交叉中和作用。DHV最早發現是在1945年由Levine在美國發現了Ⅰ型鴨病毒性肝炎。該病呈世界性分布，曾在加拿大、意大利、法國、日本、美國和埃及等地流行、在我國廣東、北京、浙江、福建、四川、安徽、廣西、江蘇、山東

3、等地相繼發生該病、目前幾乎世界范圍內主要養鴨地區均存在該病，給養鴨業帶來了巨大的經濟損失。Ⅱ型鴨病毒性肝炎是1958年首先爆發于英格蘭諾?？锁唸?，其他地區未見本病的報道。Ⅲ型鴨病毒性肝炎是1969年首次發現于美國紐約長島地區。1999年，蘇敬良等和黃安國等在北京和廣西等地在3～13日齡疑似鴨肝炎的北京鴨和櫻桃谷鴨上分離到兩株與I型和III型DHV無血清學交叉免疫反應的DHV，認為出現了新的血清型，并將其命名為新型鴨肝炎病毒。新型鴨病毒性

4、肝炎的基因組與I型結構相似，但比I型DHV基因組稍大。同時，發現高變區主要存在于VP1和VP3基因、在VP1VP3基因上存在多個T細胞抗原表位和B細胞抗原表位，VP1基因的變異致使不同血清型DHV抗原性發生改變。1.2DHV的生物學特征2006年KimMC報道了I型DHV的全基因組序列，2007年TsengCH報道了DHV1型變異株全基因組序列，為DHV的研究做出了新的突破。DHV與其他小RNA病毒相比，DHV基因組具有一些特殊的結構特

5、征TsengCH等建議將I型DHV歸為小RNA病毒科一個新的獨立的屬。T.Yun等構建出了具有感染性的DHV全長cDNA克隆，為進一步揭示DHV基因組的結構和功能及防控該病提供了良好的技術平臺。I型DHV基因組大小約為7690nt編碼2249aa、具有一個較大的開放閱讀框(F)，在基因組RNA兩端各有一段保守的非編碼區I型DHV全基因組結構依次為:5UTR(626nt)VPOVP3VPl2A12A22B2C3A3B3C3D3UTR(31

6、4nt)5UTR內含有病毒翻譯起始所必需的內部核糖體進入位點(IRES)I型DHV的IRES己報道具有8個莖環結構，3’UTR內含有病毒RNA復制和翻譯有關的poly(A)尾。I型DHV的3’UTR為314nt，新型DHV的3’UTR為366nt，均具有典型的小RNA病毒的基因組結構、I型DHV多聚蛋白具有11個切割位點，且具有與小RNA病毒相似的切割位點和保守基因序列?；蚪M編碼區包含結構蛋白和非結構蛋白，分為3種初級前體分子P1P2

7、P3其中，P1前體蛋白裂解為組成病毒衣殼蛋白VP0VP3和VP1，3種結構蛋白。P2和P3構成病毒的非結構蛋白。P2編碼2A12A22A32B和2C3種非結構蛋白，P3編碼3A3B3C和3D4種非結構蛋白。2.1非編碼區I型DHV基因組5‘UTR長626nt內含病毒翻譯起始所必需的內部核糖體進入位點(IRES)。在各病毒屬不同血清型之間，小RNA病毒IRES元件的序列和二級結構具有保守性，是病毒存活所必需的。小RNA病毒的IRES分為3

8、個型，I型IRES的病毒包括腸道病毒屬和鼻病毒屬，心臟病毒屬、口瘡病毒屬，雙?？虏《緦俚腎RES屬于II型IRES甲肝病毒屬的IRES屬于III型IRES。通過對I型DHV的RNA級結構預測表明，I型DHV的5’UTR可能含有II型IRES的頸環結構而沒有I型的三葉草結構，據此推斷I型DHV的5’UTR區域會形成II型的IRESI型DHV的3’UTR長為314317nt，新型DHV長366nt，這在小RNA病毒基因組中是最長的。有學者報

9、道I型DHV的3’UTR形成了5個發夾結構，參與病毒的復制，但它是否與宿主特異性有關還需進一步研究。病毒的3’端poly(A)尾作為病毒RNA的負鏈合成起始位點，其長度與負鏈RNA的合成效率及病毒RNA的感染能力有關。2.2編碼區DHV包含一個大的F，編碼一個多聚蛋白，多聚蛋白在翻譯過程中不斷被自身編碼的蛋白酶水解，從而分解成P1、P2和P3產物，P1、P2和P3又進一步分別分解為VP0VP3VP12A12A22B2C3A3B3C3D、

10、I型DHV的多聚蛋白的切割位點預測的結果是:VP0VP3和3C3D的切割位點為：QG2A32B2B2C2C3A3A3B以及3B3C的切割位點為QS；VP3VP1的切割位點為QM。多聚蛋白水解產生的多膚數量主要由以下因素決定:(1)基因組是否存在L蛋白。(2)VP0是否水解為VP4和VP2。(3)2A蛋白的數量。其也是小RNA病毒的基因組在不同的種屬之間存在的差異所在。小RNA病毒的基因組在不同的種屬間雖然存在差異，但是在病毒復制過程中具

11、有相似的功能、L蛋白作為前導蛋白2A是蛋白酶，參與多聚蛋白早期切割和宿主蛋白的合成關閉2B蛋白作為宿主范圍的決定因子2C蛋白是小RNA病毒中的保守序列，與病毒RNA合成相關3A蛋白與病毒毒力有關3B蛋白即VPg，是共價結合于正鏈和負鏈RNA5’末端的蛋白引物3C蛋白構成大部分多聚蛋白，3C蛋白在病毒加工處理過程和RNA復制中產生，具有水解多聚蛋白活性，并且具有一個半胱氨酸作為親核作用的活性位點.3D蛋白是RNA依賴的RNA聚合酶。2.2

12、.1結構蛋白:P1區編碼病毒的殼體蛋白，包括VP0VP3VP1基因，核苷酸序列全長2193nt、I型DHVVP0的N末端缺少GxxxST基因序列，因此其N末端可能未被十四烷基化，VP0不被蛋白酶切割為VP2和VP4。試驗證明，殼體蛋白含有多個類似于其他小RNA病毒的核心結構，即八鏈反向平行β桶結構，與其相連的環形結構位于殼粒表面，這在免疫學中占有重要作用。I型DHV的VP3與人腸道病毒(HumanparechovirusHPeV)一樣，

13、N一末端有一段殘基豐富區延伸出來，長度約20aa這段區域在HPeV中具有很強的免疫原性但它在I型DHV是否也具有同樣的功能還未見報道。(1)VPl基因:小RNA病毒中VP1蛋白作為主要的宿主保護蛋白，具有特異性抗原中和位點，VP1蛋白多暴露于病毒表面，是決定病毒抗原性的主要成分，它能夠誘導動物產生中和抗體。I型DHV與其他小RNA病毒之間衣殼蛋白的氨基酸序列差異主要存在于VP1的兩端。何內婭通過對華南地區分離到的I型和新型DHV的VP1

14、氨基酸序列比對分析表明:VP1包括了大部分的插入與缺失片段和高變異區，高變區主要分布在466495149180223位，尤其是C末端，存在點突變或連續變異。在第145146位，15株新型DHV毒株比3株I型DHV多2個氨基酸(G和G)。I型DHV和新型DHV的VP1蛋白不存在小RNA病毒科保守的RGD基序((ArgGlyAsp(RGD))而I型DHV相應序列為SGD，而新型DHV為QSD，這表明DHV的病毒吸機制和復制能力存在差異還有待

15、于進一研究。(2)VP3基因:VP3蛋白的N末端具有免疫原性，VP3的N端以及連接β鏈的環，特別是βBCβEF及βGH環的序列差異顯著、何內婭通過對華南地區分離到的I型和新型DHV與參考毒株進行VP3基因的變異分析，結果顯示，I型DHV和新型DHV的VP3基因不同點在于:第三位I型(R)→新型(K)，第15位I型(N)→新型(S)(除了臺灣新型)，第20位I型(P)→新型(S)，第22位I型(V)→新型(I)，第3940位I型(IA)→

16、新型(VT)，第45、69位I型(TI)→新型(AVV)，第78位～第107位為I型和新型DHV變異最多處，第125126位I型(MT)→新型(LL)，第143到第234位I型和新型DHV存在不連續的多位點不同，這些變異區是否影響I型和新型DHV的致病機理有待于進一步研究。2.2.2非結構蛋白:(1)P2非結構蛋白:小RNA病毒中，P2區長2271ntI型DHV推測具有多達3種不同的2A蛋白，分別是2A12A2和2A3以及2B2C。DH

17、V的2A2蛋白是小RNA病毒多聚蛋白中的1個新蛋白，由161aa組成，可能參與病毒與宿主細胞之間相互作用，推測與病毒復制有關。2A3蛋白由124aa組成，含有3個結構域。2A3蛋白可能在控制細胞生長方面起作用，目前關于小RNA病毒2B和2C蛋白的具體功能還不清楚。(2)P3非結構蛋白:P3區編碼4種非結構蛋白，分別是3A3B3C和3D。據報道，小RNA病毒科的病毒3A蛋白與病毒毒力有關。3BVPg蛋白包含34個as，這在小RNA病毒中是

18、最大的3B蛋白，并且與其他小RNA病毒的3B蛋白序列一致性很低，DHV的L(亮氨酸)被小RNA病毒KP基序中的K(賴氨酸)所取代，但是該蛋白第3位酪氨酸Tyr(Y)殘基卻很保守，它在VPg與基因組5’末端尿嘧啶的附著過程中起重要作用。DHV的3C蛋白酶是催化裂解小RNA病毒多聚蛋白中非結構蛋白部分的關鍵酶，具有絲氨酸蛋白酶和半膚氨酸蛋白酶雙重特性，病毒編碼的3C蛋白酶完成多聚蛋白的大多數切割，通常發生在谷氨酞胺和甘氨酸之間的膚鍵(Gln

19、Gly)最終產生11個終末產物。DHV的3D蛋白是依賴RNA的RNA聚合酶(RNAdependentRNApolymerase)3D蛋白在病毒RNA復制中起主導轉錄及復制作用。2.新型鴨病毒性肝炎病毒巢式RTPCR檢測方法的建立及應用近年來，DVH在世界各地不斷發生，其發病率和死亡率均呈上升趨勢，養鴨比較集中的地區均遭受了巨大的經濟損失和嚴重的威脅，由于新型鴨病毒性肝炎病毒(NDHV)的存在，許多地區頻頻出現I型鴨病毒性肝炎病毒(DHV

20、I)免疫鴨群暴發鴨肝炎的報道，嚴重制約了養鴨業的發展，不少學者己從發病鴨群中分離到工型鴨肝炎病毒的變異株(新型毒株NDHV)2007年，有學者先后證實新型DHV也具有典型的DHVI基因組結構，但其與DHVI在序列上存在顯著差異，且新型DHV均不與DHVI產生交叉反應。因此，加強NDHV病原診斷技術的研究對預防和控制鴨病毒性肝炎具有重要的現實意義。本試驗選取新型DHV與傳統工型DHV差異序列區設計引物，建立了NDHV檢測的逆轉錄巢式PCR

21、方法，旨在為新型鴨病毒性肝炎的早期診斷、流行病學調查等提供一種有效的分子生物學檢測方法。2.1材料和方法2.1.1病毒NDHV、DHVⅠ、鴨病毒性腸炎病毒(DEV)、鴨細小病毒(DPV)、新城疫病毒(NDV)、傳染性法氏囊病毒(IBDV)均由本實驗室分離并保存。2.1.2主要試劑Trizol、MMLV反轉錄酶、RibonucleaseInhibit購自生工生物工程(上海)有限公司ExTaq酶、pMD18T克隆載體及其他限制性內切酶均購自

22、寶生物工程(大連)有限公司質粒DNA提取試劑盒與膠回收試劑盒購自北京百泰克生物技術有限公司。2.1.3引物的設計與合成根據己發表的NDHV基因組序列，選取NDHV與DHVI差異序列區設計引物，利用生物學軟件設計合成了2對引物，引物序列如下:第1輪擴增引物:上游引物:ygpl5TUTUCCTUAUAAUCUUUATA3下游引物:ygp25CCUAAAUTUUAUATTAUUTG3‘第2輪擴增引物:上游引物:ygp35CAUCCACAUCC

23、AUCUACAACr3下游引物:ygp45TTUCTCTUCUUTATCCTUCC3。2.1.4病毒基因組RNA的提取按Trizol試劑使用說明提取NDHV基因組RNA，并提取其他幾種病毒的DNA或RNA。2.1.5RTPCR反應2.1.5.1反轉錄合成cDNA反轉錄反應按20μL體系操作，反轉錄條件為42℃作用60min后，95℃5min滅活反應。2.1.5.2PCR反應最適模板用量的確立分別以24681012μL反轉錄cDNA為模板

24、，保持其他試劑濃度及反應條件不變，對擴增產物進行瓊脂糖凝膠電泳觀察，確定最佳模板用量。2.1.5.3PCR反應最適引物用量的確立在50μLPCR反應體系中分別加入不同用量的引物，上下游引物(20molL)分別入0.10.30.50.711.2μL對擴增產物進行瓊脂糖凝膠電泳觀察，確定最佳引物用量。2.1.5.4PCR反應最適退火溫度的確立PCR反應的退火溫度分別取5052545658℃，對擴增產物進行瓊脂糖凝膠電泳觀察，確定最佳退火溫度

25、。2.1.5.5第1輪PLR擴增反應PCR反應按50μL體系進行，根據本試驗確定的最適模板用量為10μL，最適引物用量為0.5μL，最適退火溫度為54℃，確定PCR反應體系為:0.5μLExTaq(5UμL)、5μL10XExTaqBuffer5μLdNTP(2.5mmolL）、上下游引物ygp1、ygp2（20mo1L)各0.5、10μLcDNA，加水至50μL。PCR反應條件為:94℃4min94℃45s、54℃45s、，72℃60

26、s、30個循環72℃10min。2.1.5.6第2輪PCR擴增反應PCR反應按50μL，體系進行，模板為第1輪PCR產物1μL，最適引物用量為0.5μL，最適退火溫度為54℃，確定PCR反應體系為:0.5μLExTaq(5UpL)、5μL10XExTaqBuffer5μLdNTP(2.5mmolL)、上下游引物ygp3、ygp4(20molL)各0.5μL，加水至50μL。PCR反應條件同2.1.5.52.6擴增產物的檢測及鑒定首先取擴

27、增產物5μL在10gL二的瓊脂糖凝膠上電泳，利用凝膠成像系統掃描進行初步鑒定。然后用DNA凝膠回收試劑盒回收目的片段。將目的片段與pMD18T克隆載體于4℃過夜連接，轉化感受態菌株DH5α。挑取單個的轉化菌落，加LB溶液培養12h后用質粒提取試劑盒抽提質粒DNA，利用EcⅠHindⅢ雙酶切鑒定，陽性的克隆送生工公司進行測序鑒定。將測序結果與NDHV毒株序列進行同源性比較。2.7PCR特異性試驗分別提取NDHV、DHVⅠNDVIBDV、健

28、康鴨肝組織的RNADEV、DPV的DNA，用己建立的方法進行擴增。2.8PCR敏感性試驗NDHV標準毒株提取RNA后定量，然后10倍梯度稀釋提取的病毒基因組RNA，使其分別相當于含有10、1、0.1μL、10、1、0.1、0.01pgRNA的含量，分別進行RTPCR檢測，確定其敏感性。在第2輪PCR中，利用上而不同的病毒RNA濃度進行的RTPLR產物1μL為模板，進行巢式PCR檢測，反應程序不變，確定巢式PCR的敏感性。2.9PCR重復

29、性試驗用建立的巢式RTPCR檢測方法，對NDHV、DHVI、NDV、IBDV、DEV、DPV、健康鴨肝組織及檢測為新型鴨病毒性肝炎陽性病料3份和陰性病料3份，重復檢測3次，以驗證本方法的重復性和穩定性。2.10初步應用—臨床樣品檢測取疑似送檢病料21份，利用建立的RTPCR檢測方法進行檢測，對擴增產物全部進行測序鑒定，并利用生物學軟件進行序列分析。3.實驗結果3.1擴增產物的檢測及鑒定3.1.1擴增產物的檢測PCR擴增產物經過10gL二

30、瓊脂糖凝膠電泳，第12輪擴增產物在位于706、502bp處可見特異性DNA擴增條帶，與預期大小相符。M：DL2000DNAMarkcr1、4：是2對引物的空白對照2：第1輪擴增的PCR產物3：第2輪擴增的PCR產物3.1.2克隆載體的酶切鑒定擴增產物連接到pMD18T克隆載體上，根據病毒基因組的序列結構，利用EcⅠ和HindⅢ進行雙酶切鑒定。M：DL200CDNAMarkcr12：第12輪擴增產物重組質粒的EcⅠ和HindⅢ的雙酶切產物

31、3.1.3擴增產物的測序鑒定挑取雙酶切鑒定正確的陽性菌液送生工公司測序。DNA測序結果表明，插入到T載體的基因片段的核普酸序列為NDHV。3.2特異性試驗結果利用設計的第1輪引物對NDHV擴增出了706bp的目的基因片段，而DHVⅠ、NDVIBDV、健康鴨肝組織、DEVDPV均未擴增出目的片段(圖3)。取PCR產物各1μL為模板，利用第2輪引物進行巢式PCR檢測，結果NDHV出現502bp的擴增產物，而DHVⅠ、NDV、IBDV、健康鴨

32、肝組織、DEVDPV均未擴增出目的片段(圖4)。第1輪擴增的特異性試驗M：DL2000DNAMarKer1:NDHV2:DHVⅠ3:NDV4:IBDV5:健康鴨的肝組織6.DEV7.DPV（圖3）第2輪擴增的特異性試驗M.:DL2000DNAMarker1:NDHV2:DHVⅠ3:NDV4:IBDV5.健康鴨肝組織6.DEV7.DPV（圖4）3.3敏感性試驗結果2種引物敏感性試驗的PCR產物取5μL經10gL二瓊脂糖凝膠電泳分析，分別在

33、約706502bp附近出現特異性條帶，與各自的預期產物大小相符。從結果可以看出第1輪引物的RTPCR檢測靈敏度可以達到10pgRNA，而第2輪引物的RTPCR檢測靈敏度可以達到0.1pRNA。第1輪擴增的敏感性試驗M：DL2000DNAMarKer1~7：10、10.1μL、10、1、0.1、0.01pgRNA第2輪擴增的敏感性試驗M：DL2000DNAMarKer1~7：10、10.1μL、10、1、0.1、0.01pgRNA3.4重

34、復性試驗結果經過3次重復操作，結果一致，說明建立的方法是穩定可靠的。3.5臨床樣品檢測結果用建立的NDHV巢式RTPCR檢測方法，共檢測了21份在不同地采集的鴨病料。檢出陽性樣品3份，對陽性樣品PCR產物全部進行克隆與序列分析，結果均為NDHV。4.討論由于NDHV在自然條件下感染成年鴨后，感染者可長期帶毒和排毒而不出現臨床癥狀，在這些情況下，病鴨組織中病毒含量較低，而且組織樣品中因含有大量的蛋白和脂類等可能會影響PCR擴增，將反轉錄產

35、物直接用于PCR擴增很難見到擴增片段。巢氏PCR(nestedPCR)是PCR的一種改良模式，是指利用2對PLR引物進行2輪PCR擴增反應。首先對靶DNA進行第1步擴增，然后從第1次反應產物中取出少量作為反應模板進行第2次擴增，第2次PCR引物與第1次反應產物的序列互補，第2次PCR擴增的產物即為目的產物。由于巢式PCR反應有2次PCR擴增，從而降低了擴增多個靶位點的可能性，增加了檢測的敏感性又有2對PCR引物與檢測模板的配對，增加了檢

36、測的可靠性。巢式RTPCR技術通過反轉錄產物的PCR和巢式PCR的2次擴增，首次反應產物的轉移有助于稀釋掉那些最初可能存在于樣品中的抑制物，大大提高了檢測的靈敏度，避免了樣品檢測過程中的假陰性問題。巢式RTPCR技術具有敏感性高、特異性強、快速高效等特點，為鴨病毒型肝炎的早期診斷提供了新的模式。本試驗參考UenBank中己發表DHVI和幾株NDHV的基因組序列，經過多重序列比對分析。選取DHVI與NDHV序列變化差異明顯區設計合成2對新

37、型鴨病毒性肝炎的特異性引物，建立了NDHV檢測的巢式RTPCR檢測方法，該方法只對NDHV能夠特異性地擴增出706bp和502bp的目的片段，而對NDV、IBDV、DEV、DPV的擴增結果均為陰性，具有良好的特異性，該方法第1次擴增的敏感性為10pg，第2次擴增的敏感性達到0.1Pg，敏感性提高了100倍，具有良好的敏感性。在21份臨床樣品的檢測過程中，利用第1輪RTPCR檢測出陽性樣品2份，而利用巢式RTPLR檢測時可以檢出陽性樣品3

38、份，將所有陽性樣品的PCR產物進行測序后，序列分析結果顯示均是NDHV，說明建立的巢式RTPLR檢測方法更為敏感、特異，可以用于原始病料中NDHV的快速低含量檢測，顯示出了良好的應用前景。因此，本研究建立的巢式RTPCR方法將為國內新型鴨病毒性肝炎的診斷、流行病學調查等提供一種簡單快速的分子生物學診斷方法。鴨病毒性肝炎與鴨瘟鴨病毒性肝炎是引起雛鴨傳播迅速和高度致死的傳染病，病原為鴨肝炎病毒。鴨病毒性肝炎有3種血清型，在我國流行的主要為I

39、型。一般多發于1～5周齡的雛鴨對成年鴨沒有影響。對氯仿、乙醚、胰蛋白酶和pH值3的環境均有抵抗力。在56℃加熱60分鐘仍可存活，但加熱至62℃，30分鐘即被滅活。病毒在1%福爾馬林或2%氫氧化鈉中2小時、在2%漂白粉溶液中3小時、0.2%福爾馬林37℃，30分鐘均可使病毒滅活。鴨瘟是由鴨瘟病毒引起的急性、高度死亡率的傳染病，又稱為鴨病毒性腸炎，俗稱“大頭瘟”鴨瘟病毒是皰疹病毒，病毒粒子呈球形。病毒對外界抵抗力不強。病毒對乙醚和氯仿敏感。

40、病毒在pH值7～9時，經6小時不減低毒力，在pH值3和11時，病毒迅速滅活。各種年齡和品種的鴨均可感染，但鴨瘟流行時，成年鴨發病和死亡較嚴重，1月齡以下的雛鴨發病較少。本病于全年各季均可發生，但以春夏之交和秋季最易流行。本病主要通過消化道傳播，也可通過交配、眼結膜和呼吸道而傳播。鴨病毒性肝炎臨床上主要表現為雛鴨突然發病，身體側翻仰臥，頭向后背雙腳痙攣后蹬，角弓反張。主要病變在肝臟，肝臟腫大，質脆，色暗或發黃，肝臟表面有大小不等的出血點，

41、膽囊腫脹呈長卵圓形，充滿膽汁，膽汁呈褐色，淡茶色或淡綠色，脾有時見有腫大呈斑駁狀。許多病例腎腫脹與充血。死亡率高達90％以上。鴨瘟臨床表現為精神不佳，食欲減少或停食，渴欲增加，喜臥不愿走動病初，體溫升高到43℃以上。流淚、眼周圍羽毛粘濕，甚至有膿性分泌物，將眼瞼粘連。鼻腔亦有分泌物，部分病例頸部腫大。病鴨下痢，排綠色或灰白色稀糞。剖檢病變主要在消化道，食道黏膜有縱行排列的灰黃色假膜覆蓋或小出血斑點，假膜易剝離，剝離后食道黏膜留有潰瘍斑痕

42、，這種病變具有特征性。泄殖腔黏膜有出血或潰瘍，小腸有出血環，心臟有出血點，肝臟微腫脹、有大小不等的灰黃色或灰白色的壞死點鴨瘟患鴨以食道、泄殖腔和眼瞼黏膜呈出血性潰瘍和假膜為主要特征性病變，與患鴨病毒性肝炎完全不同。鴨病毒性肝炎患鴨肝臟有明顯腫大并且有大小不等的出血點，而鴨瘟患鴨肝臟以灰黃色或灰白色的壞死點為主要癥狀。病理變化的區別防治措施鴨病毒性肝炎首先要加強飼養管理。引進健康雛鴨苗，1月齡以內的雛鴨要隔離飼養，供給需要的維生素、礦物質

43、，飲用自來水或深井水，不得飲用野生水禽棲息的水。用具要清洗、消毒。用鴨病毒性肝炎I型弱毒疫苗進行免疫接種，成鴨于產蛋前半個月，肌肉注射1~2份只，產蛋中期，肌肉注射2~4頭份只。雛鴨出殼后1日齡或7日齡皮下注射1頭份只。在疫區對雛雞也可于1~2日齡皮下注射高免血清或卵黃）或康復鴨的血清，每只0.3~0.5毫升，可以預防感染或減少病死。一旦確診可注射鴨病毒性肝炎卵黃抗體（或高免血清）進行治療。預防鴨瘟要避免從疫區引進鴨，如必須引進，一定要

44、經過嚴格檢疫，并經隔離飼養2星期以上，證明健康后才能合群飼養。還要禁止在鴨瘟流行區域和野水禽出沒區域放牧。平時對禽場和工具進行定期消毒，被病毒污染的飼料要進行高溫消毒，飲用水可用碘氯類消毒藥消毒，工作人員的衣、帽等及飼養所用工具也要嚴格消毒。目前，該病的防制主要依靠疫苗，在受威脅區內，應注射鴨瘟弱毒疫苗。產蛋鴨適宜安排在停產期或開產前1個月注射。肉鴨一般在20日齡以上注射1次即可。發生鴨瘟時應立即采取隔離和消毒措施，對鴨群用疫苗進行緊急